产品信息

  
Taq DNA 聚合酶是一种热稳定 DNA 聚合酶，具有 5´→3´ 聚合酶活性（1,2,3）和 5´ 结构特异性核酸内切酶活性（4,5）。

随酶提供 10X 标准 Taq 反应缓冲液（无 Mg2+）和 MgCl₂。10X 标准 Taq 反应缓冲液（无 Mg2+）不含变性剂，兼容现有实验体系。

重点

• 分离自重组来源
• 提供 10X 反应缓冲液
• 反应稳定可靠
• 适用于多种模板
• 可掺入 dUTP、dITP 和荧光标记的核苷酸

产品来源

大肠杆菌菌株，携带有克隆自水生嗜热菌（Thermus aquaticus）YT-1 的 Taq DNA 聚合酶基因。

产品类别:

Taq DNA Polymerase Products

应用:

Colony PCR,

A-tailing,

Multiplex PCR,

Specialty PCR,

Routine PCR,

PCR

• 产品组分信息

  本产品提供以下试剂或组分：

  NEB #	名称	组分货号	储存温度	数量	浓度
  M0320S     -20       Taq DNA Polymerase with Standard Taq (Mg-free) Buffer M0320SVIAL -20 1 x 0.08 ml 5,000 units/ml   Standard Taq (Mg-free) Reaction Buffer Pack B9015SVIAL -20 2 x 1.5 ml 10 X   Magnesium Chloride (MgCl2) Solution B9021SVIAL -20 1 x 1.5 ml 25 mM
  M0320L     -20       Taq DNA Polymerase with Standard Taq (Mg-free) Buffer M0320LVIAL -20 1 x 0.4 ml 5,000 units/ml   Standard Taq (Mg-free) Reaction Buffer Pack B9015SVIAL -20 4 x 1.5 ml 10 X   Magnesium Chloride (MgCl2) Solution B9021SVIAL -20 5 x 1.5 ml 25 mM

• 特性和用法

  单位定义

  1 单位是指在 75℃ 条件下，30 分钟能使 15 nmol 的 dNTP 掺入酸不溶物所需的酶量。

  反应条件

  1X 标准 Taq 反应缓冲液（无 Mg2+）
  Supplement with 1.5 mM MgCl₂ 溶液

  1X 标准 Taq 反应缓冲液（无 Mg2+）
  10 mM Tris-HCl
  50 mM KCl
  (pH 8.3 @ 25°C)

  贮存溶液

  10 mM Tris-HCl
  100 mM KCl
  1 mM DTT
  0.1 mM EDTA
  50% Glycerol
  0.5% Tween® 20
  0.5% IGEPAL® CA-630
  pH 7.4 @ 25°C

  热失活

  否

  分子量

  理论上的: 94000 道尔顿

  5′ – 3′ 核酸外切酶

  Yes

  3′ – 5′ 核酸外切酶

  No

  链置换

  +

  产物末端

  • 3´ 单碱基突出末端

  单位活性检测条件

  1X ThermoPol^® 反应缓冲液、200 µM dNTP（含 [³H]-dTTP）和 15 nM 已结合引物的 M13 DNA。

  错配率

  ~ 285×10^-6bases

• 优势和特性

  应用特性

  • PCR
  • 引物延伸
  • DHPLC
  • 微阵列分析
  • 菌落 PCR
    

• 相关产品

  相关产品

  • Taq 5X 预混液
  • Taq 2X 预混液
  • Taq PCR 试剂盒
  • dNTP 混合液
  • dNTP 套装
  • 标准 Taq 反应缓冲液套装
  • Quick-Load® Taq 2X 预混液

  单独销售的组分

  • 标准 Taq 反应缓冲液（无 Mg2+）
  • MgCl₂ 溶液

• 注意事项

  1. 5´→3´ 结构特异性核酸内切酶会降解置换链。

• 参考文献

  1. Chien, A., Edgar, D.B. and Trela, J.M. (1976). J. Bact.. 127, 1550-1557.
  2. Kaledin, A.S., Sliusarenko, A.G. and Gorodetskii, S.I. (1980). Biokhimiya. 45, 644-651.
  3. Lawyer, F.C. et al. (1993). PCRMethods and Appl.. 2, 275-287.
  4. Longley, M.J., Bennett, S.E. and Mosbaugh D.W. (1990). NucleicAcids Res.. 18, 7317-7322.
  5. Lyamichev, V., Brow, M.A. and Dahlberg, J.E. (1993). Science. 260, 778-783.
  6. Saiki R.K. et al. (1985). Science. 230, 1350-1354.
  7. Powell, L.M. et al. (1987). Cell. 50, 831-840.
  8. Sun, Y., Hegamyer, G. and Colburn, N. (1993). Biotechniques. 15, 372-374.
  9. Sarkar, G., Kapelner, S. and Sommer, S.S. (1990). NucleicAcids Res.. 18, 7465.

操作说明、说明书 & 用法

• 操作说明

  1. PCR Protocol for Taq DNA Polymerase with Standard Taq (Mg-free) Buffer (M0320)

• 使用指南

  • Activity of Restriction Enzymes in PCR Buffers
  • Guidelines for PCR Optimization with Taq DNA Polymerase
  • Guidelines for PCR Optimization with Thermophilic DNA Polymerases

工具 & 资源

• 选择指南

  • DNA Polymerase Selection Chart
  • Taq Buffer Selection Chart
  • Thermophilic DNA Polymerases

• Web 工具

  • Tm Calculator

FAQs & 问题解决指南

• FAQs

  1. What ends will my PCR products have?
  2. How should I determine the appropriate annealing temperature for my reaction?
  3. What should the final primer concentration be in my PCR?
  4. What are the properties of this polymerase (fidelity, product ends, max amplicon, modified base incorporation, etc.)?
  5. What are the stability and storage requirements for NEB’s Taq and OneTaq DNA Polymerases?
  6. Is this Taq DNA Polymerase product compatible with other NEB Buffers?
  7. Can Taq/OneTaq^® DNA Polymerases be used for nick translation?
  8. How can I optimize my PCR when using Taq DNA Polymerase?

• 问题解决指南

  • PCR Troubleshooting Guide
  • Taq PCR Kit Troubleshooting Guide

• 实验技巧

  您知道吗？对于大多数 Taq 反应，当延伸温度为 68℃ 时，会发生更高效、更稳定地扩增。